近年来,邻近标记(Proximity Labeling)技术为解析亚细胞区域的蛋白质组和转录组提供了新方法。邹鹏课题组此前开发了基于遗传编码光催化剂miniSOG的RNA邻近标记技术CAP-seq,实现了活细胞内RNA空间分布的解析。然而,该技术通常需要约15分钟的光照,难以捕捉应激颗粒快速组装过程中的分子变化。因此,进一步提高光催化标记效率和时间分辨率,成为拓展该技术应用范围的关键。
定向进化是改造蛋白质功能的重要手段,其关键在于建立蛋白质催化活性与编码基因序列之间的关联。针对光催化剂在活细胞中难以直接进行活性筛选的问题,研究团队设计了一种新的筛选策略:将光催化剂与编码其自身序列的RNA连接,利用催化活性越高的突变体越容易标记对应RNA这一特性,将催化活性的信息“写入”对应的RNA。通过富集和测序这些被标记的RNA,即可从大量突变体中筛选出高活性光催化剂。基于这一策略,研究团队建立了哺乳动物细胞定向进化平台,经过两轮筛选获得了活性提高一个数量级的光催化剂Lantern。
应激颗粒是细胞在氧化应激等条件下形成的无膜细胞器,其RNA和蛋白质组成随着应激进程不断变化。通过将Lantern融合至应激颗粒核心支架蛋白G3BP1,并在应激诱导后的多个时间点进行30秒邻近标记,研究团队绘制了应激颗粒组装过程中RNA组成的动态变化图谱。结果发现,不同RNA具有明显不同的应激响应模式。其中,应激依赖性募集的RNA具有更长的转录本长度和更高的N6-甲基腺嘌呤(m6A)修饰密度,提示RNA化学修饰与应激颗粒的动态组装密切相关。
值得注意的是,部分内质网相关RNA在应激开始约10分钟时迅速富集于G3BP1周围。荧光显微成像进一步显示,早期形成的G3BP1颗粒与内质网管状结构紧密相邻,提示内质网膜可能参与部分应激颗粒的早期组装。
除RNA分析外,该研究还利用Lantern建立了快速蛋白质邻近标记方法CAP-MS,分析应激颗粒组装过程中的蛋白质组成变化。结合时间分辨转录组与蛋白质组数据发现,富含m6A修饰的RNA在应激早期比m6A识别蛋白更快地富集于应激颗粒,为理解其组装过程中RNA与蛋白质的募集顺序提供了新的线索。
图2. Lantern介导的RNA与蛋白质邻近标记揭示应激颗粒的动态组装过程
该研究通过建立哺乳动物细胞定向进化平台,开发了高活性光催化剂Lantern,显著提高了RNA和蛋白质邻近标记的时间分辨率,并将其应用于应激颗粒动态组装过程的研究。Lantern为解析活细胞内RNA和蛋白质的动态组织提供了新的化学工具,也为深入研究无膜细胞器的形成及其生物学功能创造了条件。